• Descripción de la Especie 
   
• Perfil de Isoenzimas

• Perfil Lipidico

• ANALISIS DNA por PCR

• ANALISIS ELECTROFORETICO
  
  • Por Peso Molecular (PM)
  • Por punto Isoelectrico (PI)
  • Por 2-Dimensiones (2-D)

NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Robalo garabato, robalo neto, robalo plateado, robalo blanco.

Inglés: White snook.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Lockington, W.N. 1877. Notes on some California marine fishes, with description of a new species. Proc. Calif. Acad. Sci. 7: 108-110.

SINONIMIA:  Ninguna.

DIAGNOSIS: Cuerpo esbelto, altura comprendida de 3.7 a 4.5 veces en la longitud estándar; longitud de la cabeza 2.5 a 2.9 veces en la longitud estándar; perfil predorsal recto o levemente cóncavo por detrás de los ojos. Branquiespinas totales en el primer arco (incluidos los rudimentos) 19-23 (generalmente 20-22.). Primera aleta dorsal con 8 espinas (3ª espina usualmente mas alta que la 4ª) y segunda aleta dorsal con una espina y 8-10 radios (usualmente 9). Aleta anal con 3 espinas y 6 (raramente 7) radios. La segunda espina anal plegada no alcanza el extremo posterior del pedúnculo caudal. Aleta pectoral con 14-16 rayos (usualmente 15). Escamas en la línea lateral 67-75 (usualmente 69-73). Escamas alrededor del pedúnculo caudal 25-30 (usualmente 26-28).

Coloración: Cuerpo gris con reflejos verdosos en el dorso, nunca negro azuloso. El cambio de gris a verdoso de los flancos al blanco del vientre es gradual y las aletas pélvicas generalmente presentan blanco y/o amarillo. Esta coloración puede verse disminuida a tonalidades de grises dependiendo del lugar de captura (en las zonas con mayor influencia de agua dulce la coloración es más pálida). Línea lateral negra. Los juveniles presentan el borde de las membranas que conectan las espinas de la primera aleta dorsal de color negro.

TALLA: Máxima (registrada) 92.5 cm de longitud total. Según Walford (1937) alcanza la misma talla que C. nigrescens (122 cm de longitud total).

HABITAT: Sistemas lagunar-estuarinos, zona costera y en las partes bajas de las corrientes de agua dulce.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Isla Asunción, en la costa pacífica de Baja California Sur y en el Golfo de California desde Guaymas, Sonora y Bahía Concepción, Baja California Sur, hacia el sur hasta Paita, Perú  y las Islas Galápagos. Es la especie del género mas ampliamente distribuida en el Pacífico.

LITERATURA BÁSICA:

Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.

Bussing, W.A. (1995). Centropomidae: 987-995. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.

Lockington, W.N. (1877). Notes on some California marine fishes, with description of a new species. Proc. Calif. Acad. Sci. 7: 108-110.

Rivas, L.R. (1986). Systematic review of the perciform fishes of the genus Centropomus. Copeia 1986 (3): 579-611.

Walford, L.A. (1937). Marine game fishes of the Pacific coast from Alaska to the Equator. Univ. Cal. Press, Berkeley, 205 pp. [Reimpresión, con correcciones, TFH Publs. & Smithsonian Inst. Press, 1974].

PERFIL LIPIDICO

Perfil de Acidos Grasos de Centropomus viridis (CEV). Cromatograma Típico.

Captura: Mazatlán.

Fecha de Captura: Sep. 18 y 30, 1997. Oct. 7, 1998

1 Láurico Estándar Interno C_12:0

2 Mirístico C_14:0

3 Palmítico C_16:0

4 Palmitoleico C_16:1n-7

5 Esteárico C_18:0

6 Oleico C_18:1n-9

7 Linoleico C_18:2n-6

8 Linolenico C_18:3n-3

9 Erúcico C_22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C_20:5n-3

11 Nervónico C_24:1

12 Docosahexaenoico DHA C_22:6n-3

Notas:

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH₂Cl₂/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF₃ (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

PERFIL DE ISOENZIMAS

Centropomus viridis

Los organismos 1 al 5 son homocigotos.

Enzima: Fosfoglucomutasa (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris Borato EDTA pH 8.6

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 213, mínimo 199, promedio 206.

Miliamperes: máximo 33, mínimo 11, promedio 19.

Duración de la corrida electroforética: 330 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

Centropomus viridis

Los organismos 1 al 5  para MDH-1  son heterocigotos y para MDH-2 el organismo 3 es heterocigoto y los organismos 1, 2, 4 y 5 son homocigotos.

Enzima: Malato deshidrogenasa (MDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris Borato EDTA pH 8.6

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 213, mínimo 199, promedio 206.

Miliamperes: máximo 33, mínimo 11, promedio 19.

Duración de la corrida electroforética: 330 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

Centropomus viridis, Código CEIP: CEV

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 21, 3= individuo 22, 4= individuo 23, 5= individuo 24, 

6= individuo 25, 7= individuo 26, 8= individuo 27

GI: Ramón, Azucena, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

Método: Laemmli (1970)

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)

Conc. Inyección: 30 µg/carril

Estándar: Broad range (Biorad, Laboratories)

Condiciones de Corrido: 80 V cte.

Tiempo: 2.10 hr

Temperatura: ambiente

Tinción: Azul de Coomasie al 0.125%

PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de Centropomus viridis

Centropomus viridis, código CEIP: CEV

Carril 1: estándares de DNA, carril 2 : 16S sin digerir, carriles 3-7 digeridos con HinfI.

Identificación de carriles: 2= 16S sin digerir indivíduo 01, 3= indivíduo 01, 4= indivíduo 02,

5= indivíduo 03, 6= indivíduo 04, 7= indivíduo 07

GI: Gloria Yepiz Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte

Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx, almabper@cascabel.ciad.mx

Método: Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.

Secuencias de los primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y

16Sreverse: CGGTCTGAACTCAGATCACGTA

Programa de PCR: Un ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por                1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y  72 ºC por 10 min.

Purificación del fragmento por precipitación con isopropanol.

Enzima de restricción: HinfI, digestión por 4-5 h a 37 °C

Electroforesis en geles nativos de poliacrilamida al 12%

Estándar: 1 Kb DNA Ladder

Tinción: Bromuro de etidio 1 ug/mL

Tamaños de los fragmentos (pb):