|
        
| |
 |
 |
|
Nombre de la especie:
Synodus scituliceps Jordan y Gilbert, 1882
Nombre vernacular: Chile (Shorthead
lizardfish)
Clave: Colref. CIAD 97-16;
Banco 97-05
Código CEIP: SYS
Longitud total: 23.5 |
Nombre de la especie:
Synodus scituliceps Jordan y Gilbert, 1882
Nombre vernacular: Chile (Shorthead
lizardfish)
Clave:
Colref. CIAD 97-16; Banco 97-05
Código CEIP: SYS
Tamaño: 18.2 cm |
|
NOMBRES VERNÁCULOS:
Español: Chile, picuda, liguisa, pez lagarto, pez iguana.
Inglés: Shorthead lizardfish,
pointed lizardfish.
DESCRIPCIÓN ORIGINAL:
Jordan, D.S.,
and C.H. Gilbert. 1882. Descriptions of thirty-three new species of
fishes from Mazatlan, Mexico. Proc. U.S. Natl. Mus. 4 (237):
338-365.
SINONIMIA:
Ninguna.
DIAGNOSIS:
Cuerpo muy alargado, su
altura de 7.0 a 9.5 veces en la longitud patrón, ligeramente
comprimido. Hocico puntiagudo con una protuberancia carnosa pequeña de
color negro en la punta de la mandíbula inferior. Cabeza angosta, su
anchura de 1.9 a 2.1 veces en la longitud de la misma. Aletas
pectorales no llegan al origen de las pélvicas. Base de la aleta anal
de igual longitud que la aleta dorsal. Rayos de la aleta dorsal 10 u
11. Rayos de la aleta anal de 11 a 14. Escamas en la línea lateral de
57 a 66.
Coloración: Dorso café-dorado-verdoso, costados
gris-plateados y blanco en las partes ventrales. Escamas con el borde
oscuro. Aleta caudal oscura.
TALLA:
Máxima, alcanza hasta 45 cm de longitud total.
HABITAT:
Bentónico, costero; habita en los fondos someros de arena y lodo.
DISTRIBUCIÓN
GEOGRÁFICA:
Todo el Golfo de California, México, hasta el norte de Chile,
incluyendo las Islas Galápagos.
LITERATURA BÁSICA:
Allen, G.R., and
D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific.
Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.
Bussing, W.A., y R.J. Lavenberg
(1995). Synodontidae: 1625-1628.
En:
Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H.
Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de
especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol.
III. Vertebrados-Parte 2: 1201-1813.
Bussing, W.A., y
M.I. López (1994). Peces demersales y pelágicos costeros del Pacífico
de Centro América Meridional. Publicación especial de la Revista de
Biología Tropical. Escuela de Biología y CIMAR, Universidad de
Costa Rica. 164 pp.
Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces
marinos del Perú. Inf. Inst. del Mar del Perú, Callao. Inf. (44):
387 pp.
Jordan, D.S., and C.H. Gilbert (1882). Descriptions of thirty-three new
species of fishes from Mazatlan, Mexico. Proc. U.S. Natl. Mus. 4
(237): 338-365.
Kumada, T., and Y. Hiyama (1957), Marine fishes of the Pacific coast
of Mexico. Odawara, Japan: Nisson Fish. Inst. 75 p.
Norman, J.R. (1935). A revision of the Lizard-fishes of the genera
Synodus, Trachinocephalus, and Saurida. Proc. Zool. Soc.
London (pt. 1): 99-135. |
|
PERFIL LIPIDICO
 |
|
Perfil de Acidos Grasos de
Synodus scituliceps (SYS). Cromatograma Típico.
Captura: Mazatlán.
Fecha de Captura: Nov. 19,
1997
1 Láurico Estándar Interno C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
|
Acido graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
|
C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
|
C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
% |
0.5-0.7 |
23.3-26.7 |
1.5-1.7 |
11.6-13.6 |
8.3-10.7 |
1.0-1.4 |
0.2-0.3 |
3.7-5.9 |
2.7-3.8 |
0.4-0.7 |
29.3-34.1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Notas:
Los rangos de porcentaje de
ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.
La suma del total en la tabla
no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los
porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo, Q.
María del Carmen Estrada
Contacto:
vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR
CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia de
gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura: 165ºC/20min,
5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
|
 |
|
Perfil de Acidos Grasos de
Synodus scituliceps (SYS). Cromatograma Típico.
Captura: Bahía de Kino.
Fecha de Captura: Mar. 18,
1999
1 Láurico Estándar Interno C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
|
Acido graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
|
C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
|
C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
% |
0.9-1.3 |
21.4-22.5 |
2.1-3.1 |
9.3-10.4 |
7.5-10.3 |
0.6-0.7 |
0.4-0.5 |
2.6-3.9 |
9.4-13.3 |
0.6-0.7 |
28.8-32.5 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Notas:
Los rangos de porcentaje de
ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.
La suma del total en la tabla
no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los
porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo, Q.
María del Carmen Estrada
Contacto:
vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR
CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia de
gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura: 165ºC/20min,
5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
 |
|
PERFIL DE
ISOENZIMAS
|
Synodus
scituliceps
Los
organismos 1 al 10 son homocigotos.
Enzima:
Lactato deshidrogenasa (MDH)
Tejido:
Músculo
Gel de
almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de
poder marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
257, mínimo 184, promedio 233.
Miliamperes:
máximo 74, mínimo 51, promedio 60.
Duración de
la corrida electroforética: 170 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
|
 |
Synodus
scituliceps
Los
organismos del 1 al 9 son heterocigotos.
Enzima:
Glicerol-3-fosfato deshidrogenasa (G3PDH)
Tejido:
Músculo
Gel de
almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de
poder marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
271, mínimo 196, promedio 234.
Miliamperes:
máximo 60, mínimo 42, promedio 51.
Duración de
la corrida electroforética: 180 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
|
ANALISIS ELECTROFORETICO
Por Peso
Molecular (PM)
|
|
Synodus scituliceps,
Código CEIP: SYS (Bk)
Identificación de
carriles: 1= Est, 2= individuo 211, 3= individuo 213, 4= individuo
214, 5= individuo 215,
6= individuo 217,
7=individuo 218, 8= individuo 219, 9= individuo 212
GI: Ramón, Jorge, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: Laemmli (1970)
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel:
Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyección: 30 µg/carril
Estándar: Broad range (Biorad,
Laboratories)
Condiciones de Corrido: 80
V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tinción: Azul de Coomasie
al 0.125%
|
Por punto Isoelectrico (PI)
|
|
Synodus scituliceps,
Código CEIP: SYS (Bk)
Identificación de carriles: 1=
Est, 2= individuo 211, 3= individuo 212, 4= individuo 213, 5= individuo
214,
6= individuo 215, 7=individuo
216, 8= individuo 217, 9= individuo 218, 10= individuo 219, 11= individuo
230
GI: Ramón, Jorge, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: 980.16 de la AOAC
(1990).
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH
3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyección: 100 µ
g/carril
Estándar: Broad range (Pharmacia
LKB)
Prefoco: 30 W/50 mA/1000V
/30’ min
Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5
hr
Anolito: NaoH 1N
Catolito: H3PO4 1N
Temperatura: 5 oC
Tinción: Nitrato de Plata
|
|
PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de Synodus scituliceps
 |
|
Synodus scituliceps,
código CEIP: SYS
Carril 1:16S sin
digerir, carril 2: Digerido con HinfI, carril 3: Estándares de DNA
Identificación de carriles:
1= 16S sin digerir indivíduo 01, 2= indivíduo 09
GI: Gloria Yepiz Plascencia,
Alma B. Peregrino Uriarte
Contacto:
gyepiz@cascabel.ciad.mx,
almabper@cascabel.ciad.mx
Método: Polimorfismo de la
longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA
amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.
Secuencias de los primers:
16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y
16Sreverse:
CGGTCTGAACTCAGATCACGTA
Programa de PCR: Un ciclo de
94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por
1 min, 60 ºC por 1
min y 72 ºC por 3 min, y 72 ºC por 10 min.
Purificación del fragmento
por precipitación con isopropanol.
Enzima de restricción:
HinfI, digestión por 3 h a 37 °C
Electroforesis en geles
nativos de poliacrilamida al 12%
Estándar: 1 Kb DNA Ladder
Tinción: Bromuro de etidio 1
ug/mL
Tamaños de los fragmentos (pb):
|
SYS 16S sin
digerir |
1355 |
|
SYS 16S/HinfI |
911, 422 |
|
|
