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Nombre de la especie: Centropomus
robalito Jordan y Gilbert, 1882
Nombre vernacular: constantino (little snook)
Clave: Colref. CIAD 97-10; Banco 97-02
Código CEIP: CER
Longitud total: 24.2 cm
GI: Albert, Hector
Contacto:
albert@victoria.ciad.mx |
Nombre de la especie: Centropomus
robalito Jordan y Gilbert, 1882
Nombre vernacular: constantino (little snook)
Clave: Colref. CIAD 97-10; Banco 97-02
Código CEIP: CER
Tamaño: 13.2 cm
GI: Albert, Hector
Contacto:
albert@victoria.ciad.mx
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- Inglés; little snook, yellowfin snook
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- DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Jordan,
D.S., and C.H. Gilbert (1882). Description
of five new species from Mazatlan, Mexico. Proc. U.S. Natl. Mus. 4 [for (para):1881]
(254): 458-463.
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- SINONIMIA: Ninguna
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- DIAGNOSIS:
- Cuerpo alto (altura comprendida de 3.1 a
3.8 veces en la longitud estándar); longitud de la cabeza 2.4 a 2.6 veces en la longitud
estándar; perfil predorsal levemente cóncavo por encima de los ojos. Branquiespinas
totales en el primer arco (incluidos los rudimentos), 26-31 (generalmente 27-30.). Primera
aleta dorsal con 8 espinas (3ª la mas alta) y segunda aleta dorsal con una espina y 10
radios (raramente 9 ó 11). Aleta anal con 3 espinas y 6 (raramente 7) radios. La segunda
espina anal robusta y más larga que la 3ª, plegada
alcanza una vertical a través de la base de la aleta caudal donde termina el pedúnculo
caudal. Aleta pectoral con 14-16 radios (usualmente 15). Escamas en la línea lateral
47-55 (usualmente 50-54). Escamas alrededor del pedúnculo caudal 18-22 (usualmente
19-21).
- Cuerpo de color gris claro, dorso gris
azulado, vientre blanco-plateado, aletas pélvicas y anales de color amarillo. Línea
lateral clara. Membrana entre las espinas anales 2ª y 3ª pueden ser o no de color negro.
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- TALLA: Máxima (registrada) 34.5
cm de longitud total.
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- HABITAT: Sistemas
lagunar-estuarinos, zona costera y asciende las corrientes de agua dulce.
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- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Desde
Laguna San Juan, Sonora, México hasta el norte de la costa pacífica de Colombia.
LITERATURA BÁSICA:
Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994).
Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii, Press, Honolulu, xix+322 pp.
Centropomidae: 987-995. In: Fischer, W., F. Krupp, W.
Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la
identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol.
II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.
Jordan, D.S., and C.H. Gilbert (1882). Description of five
new species from Mazatlan, Mexico. Proc. U.S. Natl.
Mus. 4
[para:1881] (254): 458-463.
Rivas, L.R. (1986). Systematic
review of the perciform fishes of the genus Centropomus. Copeia 1986(3): 579-611.
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PERFIL LIPIDICO
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Perfil de Acidos Grasos de
Centropomus robalito (CER). Cromatograma Típico.
Captura: Mazatlán.
Fecha de Captura: Sep. 18,
1997
1 Láurico Estándar Interno
C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
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Acido
graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
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C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
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C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
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% |
1.7-2.0 |
32.6-35.3 |
5.1-5.7 |
10.4-11.7 |
15.4-18.5 |
1.0-1.9 |
0.6-1.1 |
2.8-6.0 |
1.6-2.1 |
0.9-1.0 |
9.3-13.1 |
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Notas:
Los rangos de porcentaje de
ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la
especie.
La suma del total en la
tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de
los porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo,
Q. María del Carmen Estrada
Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS
POR CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia
de gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura:
165ºC/20min, 5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
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PERFIL DE
ISOENZIMAS
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Centropomus
robalito
Los
organismos 1 al 5 son heterocigotos.
Enzima:
Malato deshidrogenasa (MDH)
Tejido:
Músculo
Gel de
almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris Borato
EDTA pH 8.6
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de
poder marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
213, mínimo 199, promedio 206.
Miliamperes:
máximo 33, mínimo 11, promedio 19.
Duración de
la corrida electroforética: 330 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Centropomus
robalito
Los
organismos 1 al 5 son homocigotos.
Enzima:
Fosfoglucomutasa (PGM)
Tejido:
Músculo
Gel de
almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris Borato
EDTA pH 8.6
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de
poder marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
213, mínimo 199, promedio 206.
Miliamperes:
máximo 33, mínimo 11, promedio 19.
Duración de
la corrida electroforética: 330 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
ANALISIS ELECTROFORETICO
Por Peso
Molecular (PM)
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Centropomus robalito, Código
CEIP: CER
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 011, 3=
individuo 012, 4= individuo 013, 5= individuo 014,
6= individuo 015, 7= individuo 016
GI:
Ramón, Karina, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: Laemmli (1970)Laemmli (1970)
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyeccion: 40 µ g/carril
Estandar:
Broad range (Biorad, Laboratories)
Condicciones de Corrido: 80 V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tincion: Azul de Coomasie al 0.125%
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Por punto Isoelectrico (PI)
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Centropomus robalito, Código CEIP: CER
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 011, 3= individuo 012, 4= individuo 013,
5= individuo 014,
6= individuo 015, 7= individuo 016
GI: Ramón,
Karina, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: 980.16 de la AOAC (1990).
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyeccion: 100 µ g/carril
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyeccion: 100 µ g/carril
Estandar:
Broad range (Pharmacia LKB)
Prefoco: 30 W/50
mA/1000V /30’ min
Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr
Anolito: NaoH 1N
Catolito: H3PO4 1N
Temperatura: 5 ‘C
Tincion: Nitrato de Plata
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Por
2-Dimensiones (2-D)
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Centropomus robalito, Código CEIP:
CER
Identificación de geles: 1=individuo 2D
081 (2), 2=individuo 2D 082 (2), 3=individuo 2D 083 Rep,
4=individuo 2D 084, 5=individuo 2D 085 REP,6=individuo 2D 086.
Primera dimension por pI: Metodo980.16 de la AOAC (1990)
Buffer de Equilibrio: Tris-HCl 0.0625 M, 2.3% SDS, 5% de b-mercaptoetanol, 10 % de glicerol.
Segunda
dimension por pM: Metodo Laemmli (1970)
Buffer
tanque: Glicina-SDS-Tris pH 8.3.
Estandar: Estandar: Broad range (Biorad, Laboratories)
GI: Ramón,
Karina, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
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Análisispor DNA y PCR
Calidad
de DNA
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Centropomus robalito, Código CEIP: CER
Identificación de carriles: M= Est, 1 = individuo 011, 2= individuo 012, 3= individuo
013,
4= individuo 014, 5= individuo 015, 6= individuo 016,7= individuo 017, 8= individuo 018 ,
10= individuo 020
GI: Gloria, Francisco, Alma
Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx
Aislamiento de DNA genómico:
Metodo Aljanabi y Martinez, 1997.
Tipo de Gel: Agarosa 0.8%
Conc. Inyeccion: 1µ g/carril
Estandar: Ladder 1 Kb (Gibco, laboratorios)
Condiciones de corrido: 100 V cte./1 hr
Buffer de Corrido: TAE (Tris acetato) 0.04 M y 0.001 M EDTA
Temperatura: ambiente
Tincion: Bromuro de Etidio 1 mg/ml/10 min
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Calidad e Integridad de DNA
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Centropomus robalito, Código CEIP: CER
Identificación de carriles: M= Est, 1 = individuo 011, 2=
individuo 012, 3= individuo 013,4= individuo 014,
5= individuo 015, 6= individuo 016,7= individuo 017, 8=
individuo 018 , 10= individuo 020.
La letra C=DNA sin digerir; B= digestión con BamHI; E=
digestión con EcoRI; H= digestión con HindIII
GI: Gloria, Francisco,
Alma
Contacto:gyepiz@cascabel.ciad.mx
Integridad y Calidad de DNA
Endonucleasas de restriccion: BamHI: EcoRI; HindIII
Tiempo de digestion: 17-19 hrs/37 ‘C
Tipo de Gel: Agarosa 0.8%
Conc. Inyeccion: 1µ g/carril
Estandar: Ladder 1 Kb (Gibco, laboratorios)
Condiciones de corrido: 100 V cte./1 hr
Buffer de Corrido: TAE (Tris acetato) 0.04 M y 0.001 M EDTA
Temperatura: ambiente
Tincion: Bromuro de Etidio 1 mg/ml/10 min
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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI
de Centropomus robalito
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Centropomus viridis,
código CEIP: CER
Carril 1: 16S
sin digerir, carriles 2-6 digeridos con HinfI, carril 7:
Estándares de DNA.
Identificación de
carriles: 1= 16S sin digerir indivíduo 01, 2= indivíduo 01, 3=
indivíduo 04,
4= indivíduo 06, 5=
indivíduo 07, 6= indivíduo 08
GI: Gloria Yepiz
Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte
Contacto:
gyepiz@cascabel.ciad.mx,
almabper@cascabel.ciad.mx
Método: Polimorfismo
de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial
16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de
músculo.
Secuencias de los
primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y
16Sreverse:
CGGTCTGAACTCAGATCACGTA
Programa de PCR: Un
ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos
de 94 ºC por 1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y 72 ºC por 10
min.
Purificación del
fragmento por precipitación con isopropanol.
Enzima de restricción:
HinfI, digestión por 4-5 h a 37
°C
Electroforesis en
geles nativos de poliacrilamida al 12%
Estándar: 1 Kb DNA
Ladder
Tinción: Bromuro de
etidio 1 ug/mL
Tamaños de los
fragmentos (pb):
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CER 16S
sin digerir |
1313 |
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CER 16S/HinfI |
524, 247, 232 |
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