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Nombre de la especie:
Cynoscion reticulatus (Günther, 1864)
Nombre vernacular:
Corvina rayada (Striped
weakfish)
Clave: Colref. CIAD
98-07; Banco 98-05
Código CEIP: CYR
Longitud total: 24.2 cm |
Nombre
de la especie: Cynoscion reticulatus (Günther, 1864)
Nombre vernacular:
Corvina rayada (Striped
weakfish)
Clave: Colref. CIAD
98-07; Banco 98-05
Código CEIP: CYR
Tamaño: 13.2 cm
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NOMBRES VERNÁCULOS:
Español: Corvina
rayada.
Inglés: Striped
weakfish.
DESCRIPCIÓN ORIGINAL:
Günther, A. 1864. Report of a collection of fishes made by Messrs.
Dow, Godman, and Salvin in Guatemala. Proc. Zool. Soc. Lond. 1864
(pt. 1): 144-154.
SINONIMIA:
Ninguna.
DIAGNOSIS:
Cuerpo fusiforme,
alto y robusto. Cabeza cónica, boca oblicua, mandíbula inferior
proyectada más allá de la superior, perfil dorsal casi recto entre el
borde anterior del hocico y el origen de la aleta dorsal; mentón con 2
o más minúsculos poros, pero sin barbillones; dientes dispuestos en
1-3 hileras; un par de grandes caninos en el extremo de la mandíbula
superior y una hilera de dientes más grandes en cada mandíbula. Borde
del preopérculo no aserrado. Branquiespinas en el limbo inferior del
primer arco branquial 6-8, total 8-11. Aleta dorsal con X+I espinas y
25 a 29 radios blandos largos. Aleta anal alta con II espinas cortas y
9 radios blandos. Aletas pectorales con 15 o 16 radios, rebasan el
borde de las aletas pélvicas plegadas. Pedúnculo caudal corto; aleta
caudal truncada o emarginada, doblemente emarginada en juveniles.
Aleta caudal truncada o emarginada, doblemente emarginada en
juveniles. Escamas del cuerpo pequeñas, casi todas ctenoides, pero
cicloides bajo las aletas y en los opérculos; 56-61 escamas con poro
en la línea lateral, subiguales a las de las hileras adyacentes
(76-82) y con pequeñas escamas intercaladas. Aleta dorsal suave sin
una vaina escamosa en la base; porciones blandas de las aletas dorsal
y anal sin escamas en las membranas interradiales. Vejiga natatoria
con un par de apéndices anteriores en forma de cuernos; músculos
tamborileros presentes en machos maduros. Cráneo con un par de grandes
otolitos ovales (sagittae).
Coloración: Fondo plateado, el dorso azul metálico o parduzco, los
flancos grises y el vientre blanco; dorso y flancos con franjas
onduladas café obscuro o negruzcas y una raya logitudinal a cada lado
de la línea lateral. Aletas dorsal y pectorales oscuras, la dorsal
blanda con puntos gris oscuro. Las aletas anal y caudal amarillentas y
las ventrales pálido-blanquecinas. Cavidad bucal naranja-amarillento;
superficie interna de opérculo gris oscuro.
TALLA:
Máxima 90 cm de longitud total.
HABITAT:
Habita aguas costeras y las partes profundas y de alta salinidad en
los sistemas lagunar-estuarinos.
DISTRIBUCIÓN
GEOGRÁFICA:
Desde Laguna San Juan, Sonora, México, hasta el norte de la costa
pacífica de Colombia.
LITERATURA BÁSICA:
Allen, G.R., and
D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific.
Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.
Chao, N.L.
(1995).
Sciaenidae: 987-995. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider,
C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía
FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca.
Pacífico centro-oriental. Vol. III. Vertebrados-Parte 2:
1201-1813.
Günther, A. (1864). Report of a
collection of fishes made by Messrs. Dow, Godman, and Salvin in
Guatemala. Proc. Zool. Soc. Lond. 1864 (pt. 1): 144-154.
Walford, L.A. (1937). Marine
game fishes of the Pacific coast from Alaska to the Equator. Univ.
Cal. Press, Berkeley, 205 pp.
[Reimpresión,
con correcciones, T.F.H. Publs. & Smithsonian Inst. Press, 1974]. |
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PERFIL LIPIDICO
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Perfil de Acidos Grasos de
Cynoscion reticulatus (CYR). Cromatograma Típico.
Captura: Mazatlán.
Fecha de Captura: Oct. 7,
1998 y Oct. 14, 1999
1 Láurico Estándar Interno C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
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Acido graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
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C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
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C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
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% |
4.87 |
31.13 |
10.61 |
8.14 |
18.01 |
1.12 |
1.074 |
1.88 |
2.95 |
0.38 |
4.91 |
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Nota: La suma del total en la
tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de
los porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo, Q.
María del Carmen Estrada
Contacto:
vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR
CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia de
gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura: 165ºC/20min,
5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
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PERFIL DE
ISOENZIMAS
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Cynoscion
reticulatus
Los
organismos 1 al 5 son heterocigotos
Enzima:
Glucosa-6- fosfato isomerasa (GPI)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
297, mínimo 210, promedio 265.
Miliamperes:
máximo 56, mínimo 35, promedio 43.
Duración de la
corrida electroforética: 165 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Cynoscion
reticulatus
Los
organismos 1 al 5 para la enzima MDH-1 son homocigotos y los
organismos 1 al 5 para la enzima MDH-2 son heterocigotos
Enzima: Malato
deshidrogenasa (MDH)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
297, mínimo 210, promedio 265.
Miliamperes:
máximo 56, mínimo 35, promedio 43.
Duración de la
corrida electroforética: 165 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Cynoscion
reticulatus
Los organismos
1 al 5 son homocigotos.
Enzima:
Fosfoglucomutasa (PGM)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
297, mínimo 210, promedio 265.
Miliamperes:
máximo 56, mínimo 35, promedio 43.
Duración de la
corrida electroforética: 165 minutos.
GI: Gabriela, Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
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Cynoscion
reticulatus
Los organismos
6 al 10 son heterocigotos
Enzima:
Fosfoglucomutasa (PGM)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
297, mínimo 210, promedio 265.
Miliamperes:
máximo 56, mínimo 35, promedio 43.
Duración de la
corrida electroforética: 165 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Cynoscion
reticulatus
Los organismos
1, 3, 5, 7 y 9 son homocigotos.
Enzima:
Superóxido dismutasa (SOD)
Tejido: Hígado
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
270, mínimo 197, promedio 249.
Miliamperes:
máximo 58, mínimo 44, promedio 52.
Duración de la
corrida electroforética: 160 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Cynoscion
reticulatus
Los organismos
del 1 al 5 son homocigotos
Enzima: Lactato
deshidrogenasa (LDH)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
271, mínimo 196, promedio 234.
Miliamperes:
máximo 60, mínimo 42, promedio 51.
Duración de la
corrida electroforética: 180 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
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ANALISIS ELECTROFORETICO
Por Peso
Molecular (PM)
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Cynoscion reticulatus,
Código CEIP: CYR
Identificación de
carriles: 1= Est, 2= individuo 182, 3= individuo 183, 4= individuo
184, 5= individuo 185,
6= individuo 186, 7=
individuo 187, 8= individuo 188, 9= individuo 181,
GI: Ramón, Jorge, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: Laemmli (1970)
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel:
Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyección: 30 µg/carril
Estándar: Broad range (Biorad,
Laboratories)
Condiciones de Corrido: 80
V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tinción: Azul de Coomasie
al 0.125%
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Por punto Isoelectrico (PI)
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Cynoscion reticulatus,
Código CEIP: CYR
Identificación de carriles: 1=
Est, 2= individuo 190, 3= individuo 189, 4= individuo 188, 5= individuo
187,
6= individuo 186, 7= individuo
185, 8= individuo 184, 9= individuo 183,
10= individuo 182, 11=
individuo 181
GI: Ramón, Jorge, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: 980.16 de la AOAC
(1990).
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH
3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyección: 100 µ
g/carril
Estándar: Broad range (Pharmacia
LKB)
Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’
min
Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr
Anolito: NaoH 1N
Catolito: H3PO4 1N
Temperatura: 5 oC
Tinción: Nitrato de Plata
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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de
Cynoscion reticulatus
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Cynoscion reticulatus,
código CEIP: CYR
Carril 1: 16S sin
digerir, carril 2: Digerido con Hinf, carril 3: Estándares de
DNA.
Identificación de carriles: 1=
16S sin digerir indivíduo 02, 2= indivíduo 02
GI: Gloria Yepiz Plascencia,
Alma B. Peregrino Uriarte
Contacto:
gyepiz@cascabel.ciad.mx,
almabper@cascabel.ciad.mx
Método: Polimorfismo de la
longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA
amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.
Secuencias de los primers:
16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y
16Sreverse:
CGGTCTGAACTCAGATCACGTA
Programa de PCR: Un ciclo de
94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por
1 min, 60 ºC por 1
min y 72 ºC por 3 min, y 72 ºC por 10 min.
Purificación del fragmento
por precipitación con isopropanol.
Enzima de restricción:
HinfI, digestión por 3-5 h a 37
°C
Electroforesis en geles
nativos de poliacrilamida al 12%
Estándar: 1 Kb DNA Ladder
Tinción: Bromuro de etidio 1
ug/mL
Tamaños de los fragmentos (pb):
|
CYR 16S sin
digerir |
1571 |
|
CYR 16S/HinfI |
1018, 222 |
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