|
        
| |
 |
 |
|
Nombre de la especie: Diapterus peruvianus (Cuvier en
Cuvier y Valenciennes, 1830)
Nombre vernacular: Mojarra de aletas amarillas (Peruvian mojarra)
Clave: Colref. CIAD 98-03; Banco 98-03
Código CEIP: DIP
Longitud total: 17.5 cm
|
Nombre de la especie:
Diapterus peruvianus (Cuvier en Cuvier y Valenciennes,
1830)
Nombre vernacular: Mojarra
de aletas amarillas (Peruvian mojarra)
Clave:
Colref. CIAD 98-03; Banco 98-03
Código CEIP: DIP
Tamaño: 8.5 cm |
Español: Mojarra de aletas amarillas, malacapa, mojarra
china, mojarra peineta, periche.
Inglés: Peruvian mojarra.
DESCRIPCIÓN ORIGINAL:
Cuvier, G., et A. Valenciennes. 1830. Histoire naturelle des poissons.
Tome Sixieme. Partie I. Des Sparoϊdes; Partie II. Des Ménides. 6: i-xxiv+6
pp.+1-159, Pls. 141-169. [Valenciennes author of pp. 1-425, 493-559; Cuvier
426-491. i-xxviii + 1-470, in Strasbourg, ed.].
SINONIMIA:
Gerres brevirostris
Sauvage, 1879
DIAGNOSIS:
Cuerpo
corto, romboidal, alto y comprimido, su altura de 1.9 a 2.2 veces en la longitud
patrón; perfil predorsal muy empinado. Boca fuertemente protráctil, extremo
posterior del maxilar situado por debajo del borde anterior de la pupila. Margen
del preorbital liso, margen del preopérculo aserrado. Branquiespinas cortas
12-14 en la rama inferior del primer arco branquial. Aleta dorsal IX espinas y
9-10 radios, no escotada hasta la base. Aleta anal III espinas y 8 radios; la
segunda espina anal muy robusta y larga, su longitud dos veces la altura del
pedúnculo caudal. Aletas pectorales 15-16 radios, largas y lanceoladas llegando
al origen de la anal. Caudal fuertemente furcada. Escamas en la línea lateral
37-40; en el pedúnculo caudal, la línea lateral sigue el eje medio del cuerpo.
Coloración: Cuerpo plateado a dorado con una
iridiscencia azul en el dorso; puntuaciones oscuras en los flancos de los
adultos. Hocico oscuro. Aletas dorsal y anal oscuras; porción espinosa de la
dorsal de borde negro; aletas pélvicas y anal amarillentas con radios oscuros;
aletas pectorales amarillentas en la zona proximal.
TALLA:
Máxima 24 cm de longitud patrón.
HABITAT:
Demersal común
en las aguas costeras. Los juveniles penetran en las lagunas costeras
preferentemente en las zonas de manglares y de corrientes de marea (esteros).
Los adultos se encuentran en los fondos blandos de las aguas profundas.
DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA:
Desde la Bahía de Guaymas,
Sonora, México hasta el norte de Chile.
LITERATURA BÁSICA:
Allen, G.R., and D.R.
Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii
Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.
Bussing, W.A. (1995). Gerreidae: 1114-1128. En:
Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem
(Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los
fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1:
647-1200.
Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces
marinos del Perú. Inf. Inst. del Mar del Perú, Callao. Inf. (44): 387 pp.
Cuvier, G., et A. Valenciennes (1830). Histoire naturelle des
poissons. Tome Sixieme. Partie I. Des Sparoϊdes; Partie II. Des Ménides. 6:
i-xxiv+6 pp.+1-159, Pls. 141-169. [Valenciennes author of pp. 1-425, 493-559;
Cuvier 426-491. i-xxviii + 1-470, in Strasbourg, ed.].
Goodson, G., and J. Weisgerber (1988). Fishes of
the Pacific coast. Alaska to Peru, including the Gulf of California and the
Galapagos Islands. Stanford University Press, Stanford, California, U.S.A.,
267 pp.
Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las
comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico
mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ.
Esp. 2: 1-306 (1978).
|
PERFIL LIPIDICO
 |
|
Perfil de Acidos Grasos de
Diapterus peruvianus (DIP). Cromatograma Típico.
Captura: Mazatlán.
Fecha de Captura: Oct. 7,
1998
1 Láurico Estándar Interno C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
|
Acido graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
|
C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
|
C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
% |
3.7-4.3 |
25.9-28.0 |
3.7-4.4 |
13.4-14.4 |
10.9-11.3 |
2.2-3.3 |
1.8-2.2 |
2.3-4.5 |
2.7-5.5 |
0.4-1.1 |
4.2-9.1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Notas:
Los rangos de porcentaje de
ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.
La suma del total en la tabla
no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los
porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo, Q.
María del Carmen Estrada
Contacto:
vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR
CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia de
gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura: 165ºC/20min,
5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
 |
|
PERFIL DE
ISOENZIMAS
|
Diapterus
peruvianus
Los organismos
1 al 10 son homocigotos.
Enzima:
Fosfoglucomutasa (PGM)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
256, mínimo 255, promedio 256.
Miliamperes:
máximo 63, mínimo 37, promedio 46.
Duración de la
corrida electroforética: 140 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
|
ANALISIS ELECTROFORETICO
Por Peso
Molecular (PM)
|
|
|
Diapterus peruvianus,
Código CEIP: DIP
Identificación de
carriles: 1= Est, 2= individuo 141, 3= individuo 142, 4= individuo
143, 5= individuo 144,
6= individuo 145
GI: Ramón, Jorge,
Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: Laemmli (1970)
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel:
Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyección: 30 µg/carril
Estándar: Broad range (Biorad,
Laboratories)
Condiciones de Corrido:
80 V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tinción: Azul de
Coomasie al 0.125% |
|
Por punto Isoelectrico (PI)
|
|
Diapterus peruvianus,
Código CEIP: DIP
Identificación de carriles:
1= Est, 2= individuo 144, 3= individuo 143, 4= individuo 142, 5= individuo
141,
6= Est, 7= individuo 145,
8= individuo 146, 9= individuo 147, 10= individuo 148, 11= individuo 149,
12= individuo 150
GI: Ramón, Karina, Guille
Contacto:
rpacheco@cascabel.ciad.mx
guilleg@cascabel.ciad.mx
Método: 980.16 de la AOAC
(1990).
Análisis de Fracción
sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH
3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyección: 100 µ
g/carril
Estándar: Broad range (Pharmacia
LKB)
Prefoco: 30 W/50 mA/1000V
/30’ min
Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5
hr
Anolito: NaoH 1N
Catolito: H3PO4 1N
Temperatura: 5 oC
Tinción: Nitrato de Plata
|
|
PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI y
16S/MspI de Diapterus peruvianus
|
|
Diapterus peruvianus,
código CEIP: DIP
Carriles 1: 16S sin
digerir, carril 2: Digerido con HinfI, carril 3: Digerido con MspI,
carril 4: Estándares de DNA.
Identificación de carriles:
1= 16S sin digerir indivíduo 06, 2= indivíduo 06, 3= indivíduo 06.
GI: Gloria Yepiz Plascencia,
Alma B. Peregrino Uriarte
Contacto:
gyepiz@cascabel.ciad.mx,
almabper@cascabel.ciad.mx
Método: Polimorfismo de la
longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA
amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.
Secuencias de los primers:
16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y
16Sreverse:
CGGTCTGAACTCAGATCACGTA
Programa de PCR: Un ciclo de
94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por
1 min, 60 ºC por 1
min y 72 ºC por 3 min, y 72 ºC por 10 min.
Purificación del fragmento
por precipitación con isopropanol.
Enzima de restricción:
HinfI y MspI, digestión por 3-5 h a 37
°C
Electroforesis en geles
nativos de poliacrilamida al 12%
Estándar: 1 Kb DNA Ladder
Tinción: Bromuro de etidio 1
ug/mL
Tamaños de los fragmentos (pb):
|
DIP 16S sin
digerir |
1275 |
|
DIP 16S/HinfI |
1275 (no digirió) |
|
DIP 16S/MspI |
1275, 627 (digestión
parcial) |
|
|
