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Nombre de la especie: Centengraulis
mysticetus (Günther, 1867)
Nombre vernacular: Anchoveta chuchueco (Pacific anchoveta)
Clave: Colref. CIAD 97-13; Banco 97-04
Código CEIP: CEM
Longitud total: 20.0 cm |
Nombre de
la especie: Centengraulis mysticetus (Günther, 1867)
Nombre vernacular: Anchoveta chuchueco (Pacific anchoveta)
Clave: Colref. CIAD 97-13; Banco 97-04
Código CEIP: CEM
Tamaño: 10 cm
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NOMBRES VERNÁCULOS:
Español: Anchoveta chuchueco, ayamarca.
Inglés: Pacific anchoveta.
DESCRIPCIÓN ORIGINAL:
Günther, A. 1867.
On the fishes of the states of Central America, founded
upon specimens collected in fresh and marine waters of various parts
of that country by Messrs. Salvin and Godman and Capt. J.M. Dow.
Proc. Zool. Soc. Lond. 1866 (pt. 3): 600-604.
SINONIMIA:
Ninguna.
DIAGNOSIS:
Cuerpo muy
alto y comprimido; cabeza grande (menor a 3 en longitud patrón);
hocico relativamente puntiagudo y corto; maxilar corto, su extremo
romo no alcanza el preopérculo; branquiespinas de la rama inferior del
primer arco branquial finas y numerosas, aumentando con la edad (unas
25 a 5 cm de longitud, 40-50 a 7 cm, y 55-70 entre 10-13 cm); membrana
branquistegal muy amplia unida cubriendo enteramente el istmo, con 8
radios largos y delgados. Aleta anal moderadamente larga con 19-27
radios, los primeros 3 no ramificados.
Coloración: Dorso gris-azulado, blanco plateado en
los lados con escamas de márgenes dorados (una franja plateada
medio-lateral en peces pequeños desapareciendo entre 6-9 cm de
longitud). Aletas dorsal, anal y especialmente la caudal con borde
dorado-anaranjado; la caudal con el margen oscuro o negro.
TALLA:
Máxima 18 cm de longitud total, comúnmente 10-12 cm.
HABITAT:
Especie
pelágico-costera que normalmente se encuentra hasta 8 km mar afuera
alcanzando profundidades de hasta 25 m. Forma grandes cardúmenes sobre
fondos fangosos o fangoso-arenosos en bahías, estuarios y bocas de los
ríos.
DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA:
Desde Bahía
Magdalena, B.C.S., y Golfo de California, México hasta el Callao,
Perú.
LITERATURA BÁSICA:
Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of
the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii Press, Honolulu,
Hawaii, xix+322 pp.
Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para
identificar los peces marinos del Perú. Inst. del Mar de Perú, Callao.
Inf. (44): 387 pp.
Eschmeyer, W.N., E.S. Herald, and H. Hammann (1983).
A field guide to Pacific coast fishes of North America, from the Gulf
of Alaska to Baja California. The Peterson Field Guide
Series No. 28. Houghton Mifflin Company, Boston, U.S.A., 336 pp.
Günther, A. (1867). On the fishes of the states of
Central America, founded upon specimens collected in fresh and marine
waters of various parts of that country by Messrs. Salvin and Godman
and Capt. J.M. Dow. Proc. Zool. Soc. Lond. 1866 (pt. 3):
600-604.
Whitehead, P.J.P., y R. Rodríguez-Sánchez (1995). Engraulidae:
1067-1087. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer,
K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la
identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico
centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.
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PERFIL LIPIDICO
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Perfil de Acidos Grasos de
Centengraulis mysticetus (CEM). Cromatograma Típico.
Captura: Mazatlán.
Fecha de Captura: Oct. 16,
1997
1 Láurico Estándar Interno C12:0
2 Mirístico C14:0
3 Palmítico C16:0
4 Palmitoleico C16:1n-7
5 Esteárico C18:0
6 Oleico C18:1n-9
7 Linoleico C18:2n-6
8 Linolenico C18:3n-3
9 Erúcico C22:1
10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3
11 Nervónico C24:1
12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3
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Acido graso |
C14:0 |
C16:0 |
C16:1n-7
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C18:0 |
C18:1n-9 |
C18:2n-6
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C18:3n-3 |
C22:1 |
EPA C20:5n-3 |
C24:1 |
DHA C22:6n-3 |
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% |
8.1-9.1 |
34.1-38.2 |
7.5-8.0 |
8.7-9.8 |
10.6-18.8 |
1.2-1.3 |
0.7-0.8 |
1.5-1.6 |
5.3-5.7 |
0.3-0.5 |
6.6-7.1 |
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Notas:
Los rangos de porcentaje de
ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.
La suma del total en la tabla
no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los
porcentajes de las áreas de los picos no identificados.
GI: Dra. Belinda Vallejo, Q.
María del Carmen Estrada
Contacto:
vallejo@cascabel.ciad.mx
ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR
CROMATOGRAFIA DE GASES
Técnica de preparación
in-situ:
·
Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH
0.5N en MeOH
·
Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)
·
Extracción en Hexano
Análisis por cromatografia de
gases:
Equipo: Hewlett-Packard
Modelo 6890.
Columna capilar: SP-2560ä
(100 m x 0.25 mm di x 0.30
mm
de espesor)
Programa de temperatura: 165ºC/20min,
5º C /min, 220ºC/51min
Temperatura de inyector y
detector: 250ºC
Identificación de los
ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de
retención con estándares analíticos comerciales.
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PERFIL DE
ISOENZIMAS
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Centengraulis
mysticetus
Los organismos
1 al 5 son homocigotos.
Enzima:
Fosfoglucomutasa (PGM)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
257, mínimo 256, promedio 256.
Miliamperes:
máximo 58, mínimo 32, promedio 42.
Duración de la
corrida electroforética: 120 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
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Centengraulis
mysticetus
Los organismos
1, 3, 4, 6 y 9 son homocigotos y los organismos 2, 5, 7 y 8 son
heterocigotos
Enzima:
Lactacto deshidrogenasa (LDH)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
244, mínimo 243, promedio 244.
Miliamperes:
máximo 80, mínimo 20, promedio 43.
Duración de la
corrida electroforética: 180 minutos.
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx |
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Centengraulis
mysticetus
Los organismos
del 1 al 9 son homocigotos
Enzima:
Estearasa (EST)
Tejido: Músculo
Gel de almidón
de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9
Buffer Tris-citrato/borato
(Poulick) pH 8.7
Aparato de
electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4
Fuente de poder
marca VWR SCIENTIFIC, modelo VWR 105
Volts: máximo
257, mínimo 256, promedio 256.
Miliamperes:
máximo 58, mínimo 32, promedio 42.
Duración de la
corrida electroforética: 120 minutos
GI: Gabriela,
Estela
Contacto:
gvp@victoria.ciad.mx,
eibarra@victoria.ciad.mx
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ANALISIS ELECTROFORETICO
Por Peso
Molecular (PM)
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Cetengraulis mysticetus, Código CEIP: CEM
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 041= individuo 042,
4= individuo 043, 5= individuo 044, 6= individuo 045, 7= individuo 046
GI: Ramón, Karina, Guille
Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: Laemmli (1970)
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyeccion: 40 µ g/carril
Estandar: Broad range (Biorad, Laboratories)
Condicciones de Corrido: 80 V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tincion: Azul de Coomasie al 0.125%
El estandar se compone de 5 proteinas: La primera en la parte superior
de 200 kDa, 116, 97.4, 45 y 31
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Por punto Isoelectrico (PI)
Centengraulis mysticetus, Código CEIP: CEM
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 061, 3= individuo 062, 4=
individuo 063, 5= individuo 064, 6= individuo 065, 7= individuo 066
GI: Ramón, Karina, Guille
Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: 980.16 de la AOAC (1990).
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyeccion: 100 µ g/carril
Estandar: Broad range (Pharmacia LKB)
Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’ min
Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr
Anolito: NaoH 1N
Catolito: H3PO4 1N
Temperatura: 5 oC
Tincion: Nitrato de Plata
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Análisispor DNA y PCR
PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI
de Cetengraulis mysticetus
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Cetengraulis mysticetus,
código CEIP: CEM
Carril 1: Estándares de
DNA, carril 2:16S sin digerir, carriles 3-6: Digeridos con HinfI.
Identificación de
carriles: 2= 16S sin digerir indivíduo 06, 3= indivíduo 05, 4= indivíduo
06,
5= indivíduo 08, 6=
indivíduo 10
GI: Gloria Yepiz
Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte
Contacto:
gyepiz@cascabel.ciad.mx,
almabper@cascabel.ciad.mx
Método: Polimorfismo de la
longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA
amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.
Secuencias de los primers:
16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y
16Sreverse:
CGGTCTGAACTCAGATCACGTA
Programa de PCR: Un ciclo
de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC
por
1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y 72 ºC por
10 min.
Purificación del fragmento
por precipitación con isopropanol.
Enzima de restricción:
HinfI, digestión por 4-5 h a 37
°C
Electroforesis en geles
nativos de poliacrilamida al 7.5%
Estándar: 1 Kb DNA Ladder
Tinción: Bromuro de etidio
1 ug/mL
Tamaños de los fragmentos
(pb):
|
CEM 16S sin
digerir |
1148 |
|
CEM 16S/HinfI |
507, 417 |
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