Paralabrax maculatofasciatus
 

 

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Nombre de la especie: Paralabrax maculatofasciatus (Steindachner, 1868)

Nombre vernacular: Cabrilla arenera (Spotted sand bass)

Clave: Colref. CIAD 99-03; Banco 99-03

Código CEIP: PAM

Longitud total: 26.3 cm

Nombre de la especie: Paralabrax maculatofasciatus (Steindachner, 1868)

Nombre vernacular: Cabrilla arenera (Spotted sand bass)

Clave: Colref. CIAD 99-03; Banco 99-03

Código CEIP: PAM

Tamaño: 12.8 cm


NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Cabrilla arenera, cabrilla de roca.

Inglés: Spotted sand bass, red spotted rock bass, spotted cabrilla.

 

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Steindachner, F. 1868. Ichthyologische Abhandlung. Anz. Akad. Wiss. Wien 5 (14): 120.

 

SINONIMIA: Ninguna.

 

DIAGNOSIS: Cuerpo fusiforme, comprimido, esbelto (altura comprendida de 3.0 a 3.4 veces en la longitud patrón). Longitud de la cabeza de 2.4 a 2.8 veces en la longitud patrón (en ejemplares de 15 a 27 cm de longitud patrón). Preopérculo finamente aserrado. Branquiespinas en la rama inferior del primer arco branquial de 13 a 15 (incluyendo 4 ó 5 rudimentos). Aleta dorsal con X espinas (la tercera más de 2.5 veces la longitud de la segunda y netamente más larga que la cuarta) y 14 (raramente 13) radios blandos. Aleta anal con III espinas y de 6 a 8 radios blandos. Aletas pectorales de 16 o 17 radios blandos. Aleta caudal truncada o ligeramente cóncava. Línea lateral con 61 a 80 escamas con poro y de 90 a 120 series laterales de escamas en el cuerpo. 24 vértebras.

 

Coloración: Fondo del cuerpo olivo-café, cubierto en todas partes (incluyendo las aletas medianas) por manchas café-rojizas (excepto en las partes inferiores). Estas manchas son más oscuras en ciertas zonas del cuerpo, donde forman 6 ó 7 franjas verticales, la primera (la más tenue) inmediatamente por detrás de la aleta pectoral y la última a la base de la aleta caudal. En la parte baja de los flancos, las manchas a menudo confluyen para formar franjas horizontales cortas semejantes a las cuentas de un rosario. Una franja oscura se extiende frecuentemente desde el borde ventral del ojo rojizo hasta la membrana branquiostegal.

 

TALLA: 60 cm de longitud total.

 

HABITAT: Pez demersal que habita sobre fondos arenosos cerca de arrecifes rocosos y praderas de plantas marinas, desde la zona intermareal hasta 61 m de profundidad. Se alimenta de pequeños peces y crustáceos bentónicos.

 

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Desde Monterey, California, U.S.A., todo el Golfo de California hasta las costas de Guerrero, México. El registro más sureño es el de Nicaragua, en 1997. Mientras que el mas norteño es el de San Francisco, California, U.S.A., a finales del siglo XIX.

 

LITERATURA BÁSICA:

 

Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.

 

 

Eschmeyer, W.N., E.S. Herald, and H. Hammann (1983). A field guide to Pacific coast fishes of North America, from the Gulf of Alaska to Baja California. The Peterson Field Guide Series No. 28. Houghton Mifflin Company, Boston, U.S.A., 336 pp.

 

Goodson, G., and J. Weisgerber (1988). Fishes of the Pacific coast. Alaska to Peru, including the Gulf of California and the Galapagos Islands. Stanford University Press, Stanford, California, U.S.A., 267 pp.

 

Heemstra, P.C. (1995). Serranidae: 1565-1613. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. III. Vertebrados-Parte 2: 1201-1813.

 

Steindachner, F. (1968). Ichthyologische Abhandlung. Anz. Akad. Wiss. Wien 5 (14): 120.WB00489_.gif (666 bytes)


PERFIL LIPIDICO

 

Perfil de Acidos Grasos de Paralabrax maculatofasciatus (PAM). Cromatograma Típico.

Captura: Bahía de Kino.

Fecha de Captura: Mar. 18, 1999

 

1 Láurico Estándar Interno C12:0

2 Mirístico C14:0

3 Palmítico C16:0

4 Palmitoleico C16:1n-7

5 Esteárico C18:0

6 Oleico C18:1n-9

7 Linoleico C18:2n-6

8 Linolenico C18:3n-3

9 Erúcico C22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3

11 Nervónico C24:1

12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3

 

 

Acido graso

C14:0

C16:0

C16:1n-7

 

C18:0

C18:1n-9

C18:2n-6

 

C18:3n-3

C22:1

EPA C20:5n-3

C24:1

DHA C22:6n-3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

%

4.9-5.4

24.4-25.5

8.3-8.8

7.8-8.6

11.5-12.2

1.2-1.5

0.7-0.8

2.4-2.7

10.5-12.0

0.7-0.9

9.7-11.1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Notas:

 

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

 

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

 

 

 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

 

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

 

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

 

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

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PERFIL DE ISOENZIMAS

Paralabrax maculatofasciatus

Los organismos del 1 al 10 son heterocigotos.

Enzima: Fosfoglucomutasa (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 256, mínimo 256, promedio 256.

Miliamperes: máximo 59, mínimo 32, promedio 45.

Duración de la corrida electroforética: 120 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx eibarra@victoria.ciad.mx

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ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

Paralabrax maculatofasciatus, Código CEIP: PAM

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 231, 3= individuo 232, 4= individuo 233, 5= individuo 234, 

6= individuo 235, 7= individuo 236, 8= individuo 237

GI: Ramón, Jorge, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: Laemmli (1970)

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)

Conc. Inyección: 30 µg/carril

Estándar: Broad range (Biorad, Laboratories)

Condiciones de Corrido: 80 V cte.

Tiempo: 2.10 hr

Temperatura: ambiente

Tinción: Azul de Coomasie al 0.125%

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Por punto Isoelectrico (PI)

Paralabrax maculatofasciatus, Código CEIP: PAM

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 240, 3= individuo 239, 4= individuo 238, 5= individuo 237, 

6= individuo 236, 7= individuo 235, 8= individuo 234, 9= individuo 233,

10= individuo 232, 11= individuo 231.

GI: Ramón, Edith, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: 980.16 de la AOAC (1990).

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)

Conc. Inyección: 100 µ g/carril

Estándar: Broad range (Pharmacia LKB)

Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’ min

Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr

Anolito: NaoH 1N

Catolito: H3PO4 1N

Temperatura: 5 oC

Tinción: Nitrato de Plata

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Las imágenes e información contenidas en este Catalogo son propiedad Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. (CIAD) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT), y solamente pueden ser utilizados con fines informativos. Para la reproducción parcial o total de la información con fines académicos, se deberá contar con la autorización escrita de la Direccion Genral del CIAD, A. C.

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 Diseño y Elaboración
Felipe Isac Martínez
E-mail: fisac@cascabel.ciad.mx

Centro de Computo
CIAD-Hermosillo
Carretera a la Victoria km. 0.6, CP 83000
Hermosillo, Sonora
Tel (
662) 289-24-00 ext: 278