Eucinostomus entomelas
 

 

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Nombre de la especie: Eucinostomus entomelas Zahuranec en Yáñez-Arancibia, 1980

Nombre vernacular: Mojarra blanca (Darkspot mojarra)

Clave: Colref. CIAD 97-16; Banco 97-05

Código CEIP: EUE

Longitud total: 18.8 cm

Nombre de la especie: Eucinostomus entomelas Zahuranec en Yáñez-Arancibia, 1980

Nombre vernacular: Mojarra blanca (Darkspot mojarra)

Clave: Colref. CIAD 97-16; Banco 97-05

Código CEIP: EUE

Tamaño: 11.0 cm


NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Mojarra blanca, palmito brillante.

Inglés: Darkspot mojarra.

 

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).

 

Zahuranec, B.V. 1967. The gerrid fishes of the genus Eucinostomus in the eastern Pacific. MSc Thesis (unpublished). Scripps Inst. Oceanogr., Univ. of California, La Jolla, San Diego, U.S.A., 74 pp.

 

SINONIMIA: Ninguna.

 

DIAGNOSIS: Cuerpo fusiforme, comprimido, esbelto (altura comprendida de 2.4 a 2.9 veces en la longitud patrón). Boca fuertemente protractil. Cabeza de 2.8 a 3.3 veces en la longitud patrón. Perfil dorsal generalmente derecho con una suave concavidad sobre el ojo; ojo de 8.3 a 10 veces en la longitud cefálica. Aletas: dorsal con 10 espinas y 10 radios, anal con 3 espinas y 7 radios, pectorales de 15 a 16 radios, ventrales 1 espina y 5 radios. Branquiespinas cortas de 7 a 9 en la rama inferior del primer arco branquial.

 

Coloración: Dorso y flancos plateados ligeramente cafesoso arriba y amarillento abajo. Una característica mancha negra en la parte superior interna del opérculo. Aletas transparentes, la porción espinosa de la dorsal de borde negro. Individuos pequeños con 3 a 10 franjas verticales en la parte superior del cuerpo que se vuelven tenues en los juveniles y desaparecen en los adultos.

 

TALLA: 18 cm de longitud patrón.

 

HABITAT: Vive sobre sustratos blandos en aguas costeras y bahías someras, generalmente formando cardúmenes. Los juveniles se encuentran en lagunas costeras y estuarios.

 

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Desde Bahía Sebastían Vizcaíno, parte central del Golfo de California, México hasta el Callao, Perú.

 

LITERATURA BÁSICA:

 

Bussing, W.A. (1995). Gerreidae: 1114-1128. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.

 

Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces marinos del Perú. Inf. Inst. del Mar del Perú, Callao. Inf. (44): 387 pp.

Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).

 

Zahuranec, B.V. (1967). The gerrid fishes of the genus Eucinostomus in the eastern Pacific. MSc Thesis (unpublished). Scripps Inst. Oceanogr., Univ. of California, La Jolla, San Diego, U.S.A., 74 pp.WB00489_.gif (666 bytes)


PERFIL LIPIDICO

 

Perfil de Acidos Grasos de Eucinostomus entomelas (EUE). Cromatograma Típico.

Captura: Mazatlán.

Fecha de Captura: Nov. 19, 1997

 

1 Láurico Estándar Interno C12:0

2 Mirístico C14:0

3 Palmítico C16:0

4 Palmitoleico C16:1n-7

5 Esteárico C18:0

6 Oleico C18:1n-9

7 Linoleico C18:2n-6

8 Linolenico C18:3n-3

9 Erúcico C22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3

11 Nervónico C24:1

12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3

 

 

Acido graso

C14:0

C16:0

C16:1n-7

 

C18:0

C18:1n-9

C18:2n-6

 

C18:3n-3

C22:1

EPA C20:5n-3

C24:1

DHA C22:6n-3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

%

2.5-3.3

24.9-25.7

2.9-3.9

10.8-11.8

10.9-13.3

0.6-0.7

1.9-2.1

4.2-6.0

2.7-3.5

1.8-2.1

15.6-21.0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Notas:

 

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

 

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

 

 

 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

 

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

 

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

 

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

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PERFIL DE ISOENZIMAS

Eucinostomus entomelas

Los organismos del 1 al 10 son homocigotos.

Enzima: Glucosa-6- fosfato isomerasa (GPI)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 246, mínimo 245, promedio 245.

Miliamperes: máximo 61, mínimo 26, promedio 41.

Duración de la corrida electroforética: 155 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

 

Eucinostomus entomelas

Los organismos 1, 3, 8 y 9 son homocigotos y los organismos 2, 4, 5, 6, 7 y 10 son heterocigotos.

Enzima: Fosfoglucomutasa (PGM) 

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 256, mínimo 253, promedio 255.

Miliamperes: máximo 60, mínimo 29, promedio 39.

Duración de la corrida electroforética: 180 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx eibarra@victoria.ciad.mx

 

Eucinostomus entomelas

Los organismos 1 al 10 son homocigotos.

Enzima: Lactato deshidrogenasa (LDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 246, mínimo 245, promedio 245.

Miliamperes: máximo 61, mínimo 26, promedio 41.

Duración de la corrida electroforética: 155 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

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ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

 

Eucinostomus entomelas, Código CEIP: EUE
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 091, 3= individuo 092, 4= individuo 093, 5= individuo 094, 6= individuo 095, 7= individuo 096
GI: Ramón, Karina, Guille
Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: Laemmli (1970)
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)
Conc. Inyeccion: 40 µ g/carril
Estandar: Broad range (Biorad, Laboratories)
Condicciones de Corrido: 80 V cte.
Tiempo: 2.10 hr
Temperatura: ambiente
Tincion: Azul de Coomasie al 0.125%

El estandar se compone de 5 proteinas: 200, 116, 97.4, 45 y 31 kDa
 

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Por punto Isoelectrico (PI)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Eucinostomus entomelas, Código CEIP: ORC
Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 111, 3= individuo 112, 4= individuo 113, 5= individuo 114, 6= individuo 115, 7= individuo 116
GI: Ramón, Karina, Guille
Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx
Metodo: 980.16 de la AOAC (1990).
Análisis de Fracción sarcoplásmica
Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)
Conc. Inyeccion: 100 µ g/carril
Estandar: Broad range (Pharmacia LKB)
Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’ min

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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI y 16S/MspI de Eucinostomus entomelas

 

 

Eucinostomus entomelas, código CEIP: EUE

Carriles 1 y 5: 16S sin digerir, carriles 2 y 3: Digeridos con HinfI, carriles 6 y 7: Digeridos con MspI, carriles 4 y 8: Estándares de DNA.

Identificación de carrilES: 1= 16S sin digerir indivíduo 01, 2= indivíduo 01, 3= indivíduo 07, 5= indivíduo 07, 6= indivíduo 07, 7= indivíduo 01

 

GI: Gloria Yepiz Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte

Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx, almabper@cascabel.ciad.mx

 

Método: Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.

Secuencias de los primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y 16Sreverse: CGGTCTGAACTCAGATCACGTA

Programa de PCR: Un ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por 1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y  72 ºC por 10 min.

Purificación del fragmento por precipitación con isopropanol.

Enzima de restricción: HinfI, digestión por 3-5 h a 37 °C

Electroforesis en geles nativos de poliacrilamida al 12%

Estándar: 1 Kb DNA Ladder

Tinción: Bromuro de etidio 1 ug/mL

Tamaños de los fragmentos (pb):

EUE 16S sin digerir

1252

EUE 16S/HinfI

1252

EUE 16S/MspI

966, 284

 

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Las imágenes e información contenidas en este Catalogo son propiedad Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. (CIAD) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT), y solamente pueden ser utilizados con fines informativos. Para la reproducción parcial o total de la información con fines académicos, se deberá contar con la autorización escrita de la Direccion Genral del CIAD, A. C.

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 Diseño y Elaboración
Felipe Isac Martínez
E-mail: fisac@cascabel.ciad.mx

Centro de Computo
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Hermosillo, Sonora
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662) 289-24-00 ext: 278