Eucinostomus currani
 

 

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Nombre de la especie: Eucinostomus currani Zahuranec en Yáñez-Arancibia, 1980

Nombre vernacular: Mojarra aleta de bandera (Flagfin mojarra)

Clave: Colref. CIAD 97-13; Banco 97-04

Código CEIP: EUC

Longitud total: 17 cm

Nombre de la especie: Eucinostomus currani Zahuranec en Yáñez-Arancibia, 1980

Nombre vernacular: Mojarra aleta de bandera (Flagfin mojarra)

Clave: Colref. CIAD 97-13; Banco 97-04

Código CEIP: EUC

Tamaño: 10 cm


NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Mojarra aleta de bandera, mojarra cantileña, palmito bandera.

Inglés: Flagfin mojarra.

 

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Yáñez-Arancibia, A. 1980. Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).

 

Zahuranec, B.V. 1967. The gerrid fishes of the genus Eucinostomus in the eastern Pacific. MSc Thesis (unpublished). Scripps Inst. Oceanogr. Univ. of California, La Jolla, San Diego, U.S.A., 74 pp.

 

SINONIMIA: Ninguna.

 

DIAGNOSIS: Cuerpo fusiforme, comprimido, moderadamente alargado (altura comprendida de 2.5 a 3.1 veces en la longitud patrón). Boca fuertemente protractil, extremo posterior del maxilar situado por debajo del borde anterior del ojo. Borde del preopérculo liso. Cabeza de 3.2 a 2.9 en la longitud patrón, el perfil dorsal generalmente derecho, pero suavemente convexo sobre el hocico. Ojo de 3.7 a 2.9 en la cabeza. Branquiespinas 7 a 9 sobre la rama inferior del primer arco. Aleta dorsal con 9 espinas y 10 radios. Aleta anal con 3 espinas y 7 radios. Aletas pectorales de 15 a 17 rayos. Aletas pélvicas con 1 espina y 5 rayos.

 

Coloración: Dorso y flancos plateados. La dorsal espinosa notablemente tribandeada, la banda del extremo distal intensamente negra (entre la 2ª y 6ª espina), la media con claros plateados y la base gris, esta última corresponde a melanóforos del tercio basal de la aleta. Demás aletas transparentes sin puntuaciones grises.

 

TALLA: 21 cm de longitud total.

 

HABITAT: Especie demersal que ocurre en aguas marinas, salobres y dulces. Vive sobre sustratos blandos en aguas costeras y bahias. Los juveniles son comunes en ambientes estuarinos, manglares, canales de marea (esteros) y también penetran en los ríos hasta 20 km de la costa. Los adultos prefieren aguas más profundas.

 

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Desde la Bahía de Anaheim, California USA, todo el Golfo de California, México hasta El Callao, Perú.

 

LITERATURA BÁSICA:

 

Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.

 

Bussing, W.A. (1995). Gerreidae: 1114-1128. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.

 

Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces marinos del Perú. Inf. Inst. del Mar del Perú, Callao. Inf. (44): 387 pp.

 

Goodson, G., and J. Weisgerber (1988). Fishes of the Pacific coast. Alaska to Peru, including the Gulf of California and the Galapagos Islands. Stanford University Press, Stanford, California, U.S.A., 267 pp.

 

Miller, D.J., and R.N. Lea (1972). Guide of the coastal marine fishes of California. Fish Bull. Dept. Fish Game Calif. No. 157: 1-235.

 

Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).

 

Zahuranec, B.V. (1967). The gerrid fishes of the genus Eucinostomus in the eastern Pacific. MSc Thesis (unpublished). Scripps Inst. Oceanogr., Univ. of California, La Jolla, San Diego, U.S.A., 74 pp.


PERFIL LIPIDICO

 

Perfil de Acidos Grasos de Eucinostomus currani (EUC). Cromatograma Típico.

Captura: Mazatlán.

Fecha de Captura: Oct. 16, 1997 y Oct. 14, 1999

 

1 Láurico Estándar Interno C12:0

2 Mirístico C14:0

3 Palmítico C16:0

4 Palmitoleico C16:1n-7

5 Esteárico C18:0

6 Oleico C18:1n-9

7 Linoleico C18:2n-6

8 Linolenico C18:3n-3

9 Erúcico C22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3

11 Nervónico C24:1

12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3

 

 

Acido graso

C14:0

C16:0

C16:1n-7

 

C18:0

C18:1n-9

C18:2n-6

 

C18:3n-3

C22:1

EPA C20:5n-3

C24:1

DHA C22:6n-3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

%

2.0-2.4

25.0-26.5

2.4-2.5

12.2-13.1

10.5-10.9

0.6-0.7

1.7-1.8

5.3-5.7

2.9-3.1

1.5-1.6

21.5-22.6

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Notas:

 

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

 

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

 

 

 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

 

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

 

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

 

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

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PERFIL DE ISOENZIMAS

Eucinostomus currani

Los organismos 1 al 7 son homocigotos.

Enzima: Lactato deshidrogenasa (LDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 257, mínimo 256, promedio 256.

Miliamperes: máximo 58, mínimo 32, promedio 42.

Duración de la corrida electroforética: 120 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Eucinostomus currani

Los organismos 1 al 7 son heterocigotos

Enzima: Fosfoglucomutasa (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 257, mínimo 256, promedio 256.

Miliamperes: máximo 58, mínimo 32, promedio 42.

Duración de la corrida electroforética: 120 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

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ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

Eucinostomus currani, Código CEIP: EUC

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 51, 3= individuo 52, 4= individuo 53, 5= individuo 54, 

6= individuo 55, 7= individuo 56, 8= individuo 57

GI: Ramón, Dora, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: Laemmli (1970)

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)

Conc. Inyección: 30 µg/carril

Estándar: Broad range (Biorad, Laboratories)

Condiciones de Corrido: 80 V cte.

Tiempo: 2.10 hr

Temperatura: ambiente

Tinción: Azul de Coomasie al 0.125%

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Por punto Isoelectrico (PI)

 

 

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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de Eucinostomus currani

 

 

Eucinostomus currani, código CEIP: EUC

Carril 1: Estándares de DNA, carril 2: 16S sin digerir, carril 3 y 4: Digeridos con HinfI.

Identificación de carriles: 2= 16S sin digerir indivíduo 02, 3= indivíduo 02, 4= indivíduo 01.

 

GI: Gloria Yepiz Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte

Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx, almabper@cascabel.ciad.mx

 

Método: Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.

Secuencias de los primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y 16Sreverse: CGGTCTGAACTCAGATCACGTA

Programa de PCR: Un ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por 1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y  72 ºC por 10 min.

Purificación del fragmento por precipitación con isopropanol.

Enzima de restricción: HinfI, digestión por 3-5 h a 37 °C

Electroforesis en geles nativos de poliacrilamida al 12%

Estándar: 1 Kb DNA Ladder

Tinción: Bromuro de etidio 1 ug/mL

Tamaños de los fragmentos (pb):

EUC 16S sin digerir

1346

EUC 16S/HinfI

1346 (no digirió)

 

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Las imágenes e información contenidas en este Catalogo son propiedad Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. (CIAD) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT), y solamente pueden ser utilizados con fines informativos. Para la reproducción parcial o total de la información con fines académicos, se deberá contar con la autorización escrita de la Direccion Genral del CIAD, A. C.

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 Diseño y Elaboración
Felipe Isac Martínez
E-mail: fisac@cascabel.ciad.mx

Centro de Computo
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Carretera a la Victoria km. 0.6, CP 83000
Hermosillo, Sonora
Tel (
662) 289-24-00 ext: 278