Gerres cinereus
 

 

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Nombre de la especie: Gerres cinereus (Walbaum, 1792)

Nombre vernacular: Mojarra plateada (Yellow-fin mojarra)

Clave: Colref. CIAD 98-04; Banco 98-02

Código CEIP: GEC

Longitud total: 22.8 cm

Nombre de la especie: Gerres cinereus (Walbaum, 1792)

Nombre vernacular: Mojarra plateada (Yellow-fin mojarra)

Clave: Colref. CIAD 98-04; Banco 98-02

Código CEIP: GEC

Tamaño: 11.7 cm


NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Mojarra plateada, mojarra de casta, chavela.

Ingles: Yellow-fin mojarra, broad sad.

 

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Walbaum, J.J. 1792. Petri Artedi Sueci Genera piscium. In quibus systema totum ichthyologiae proponitur cum classibus, ordinibus, generum characteribus, specierum differentiis, observationibus plurimis. Redactis speciebus 242 ad genera 52. Ichthylogiae, pars iii. Pt. 3: 1-723, Pls. 1-3.

 

SINONIMIA: Ninguna.

 

DIAGNOSIS: Cuerpo comprimido y alto (altura entre 2.3 y 2.7 en la longitud patrón). Cabeza de 2.8 a 3.1 en la longitud patrón. Boca fuertemente protractil. Hocico puntiagudo 2.7 a 3.3 en la longitud cefálica. Ojos de 2.7 a 8.8 en la longitud cefálica. Borde posterior del maxilar llega al margen anterior de la órbita, peropérculo liso. Aleta dorsal escotada, segunda a cuarta espina mucho más larga que las demás, con III espinas y 10 radios. Aleta anal con III espinas y 7 radios. Segunda espina anal moderadamente larga. Aletas pectorales más largas que la cabeza llegando al origen de la aleta anal, de 2.7 a 3.0 en la longitud del cuerpo. De 39 a 45 escamas en una serie longitudinal por arriba de la línea lateral. Branquiespinas cortas, 7 a 8 sobre la rama inferior del primer arco.

 

Coloración: Dorso pardo grisáceo plateado. Flancos con 7 a 10 tenues franjas verticales azules y franjas longitudinales oscuras. Vientre pálido. Aletas con puntuaciones oscuras, pectorales pálidas. Aletas pélvicas y anal amarillentas.

 

TALLA: Máxima 41 cm de longitud total.

 

HABITAT: Habita en aguas costeras someras sobre fondos arenosos y rompientes, praderas de pastos marinos, cerca de arrecifes y especialmente en pequeñas áreas estuarinas bordeadas de mangle, inclusive penetra en la parte baja de los ríos.

 

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Ambas costas de América. En el Atlántico Occidental desde Bermudas y Florida, EUA, Bahamas, norte del Golfo de México, todo el Mar Caribe hasta Río de Janeiro, Brazil. En el Pacífico Oriental Tropical, desde Bahía Magdalena (BCS) y dentro del Golfo de California desde el norte de la Isla Tiburón, Sonora, México hasta Chimbote, Perú, incluyendo las Islas Galápagos.

 

LITERATURA BÁSICA:

 

Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii, Press, Honolulu, xix+322 pp.

 

Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces marinos del Perú. Inf. Inst. del Mar del Perú, Callao. Inf. (44): 588 pp.

 

Bussing, W.A. (1995). Gerreidae: 1114-1128. In: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. II. Vertebrados-Parte 1: 647-1200.

 

Walbaum, J.J. (1792). Petri Artedi Sueci Genera piscium. In quibus systema totum ichthyologiae proponitur cum classibus, ordinibus, generum characteribus, specierum differentiis, observationibus plurimis. Redactis speciebus 242 ad genera 52. Ichthylogiae, pars iii. Pt. 3: 1-723, Pls. 1-3.

 

Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).


PERFIL LIPIDICO

 

Perfil de Acidos Grasos de Gerres cinereus (GEC). Cromatograma Típico.

Captura: Mazatlán.

Fecha de Captura: Oct. 7, 1998

 

1 Láurico Estándar Interno C12:0

2 Mirístico C14:0

3 Palmítico C16:0

4 Palmitoleico C16:1n-7

5 Esteárico C18:0

6 Oleico C18:1n-9

7 Linoleico C18:2n-6

8 Linolenico C18:3n-3

9 Erúcico C22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3

11 Nervónico C24:1

12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3

 

 

Acido graso

C14:0

C16:0

C16:1n-7

 

C18:0

C18:1n-9

C18:2n-6

 

C18:3n-3

C22:1

EPA C20:5n-3

C24:1

DHA C22:6n-3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

%

2.4-5.0

30.2-33.9

3.5-5.3

12.8-15.0

12.7-18.6

1.3-3.4

1.4-1.8

3.4-6.1

2.9-4.4

0.9-1.3

6.6-10.24

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Notas:

 

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

 

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

 

 

 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

 

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

 

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

 

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

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PERFIL DE ISOENZIMAS

Gerres cinereus

Los organismos del 6 al 10 son homocigotos

Enzima: Lactato deshidrogenasa  (LDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 271, mínimo 196, promedio 234.

Miliamperes: máximo 60, mínimo 42, promedio 51.

Duración de la corrida electroforética: 180 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

 

Gerres cinereus

Los organismos del 1 al 5 son homocigotos

Enzima: Lactato deshidrogenasa  (LDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 6 al 10 son homocigotos

Enzima: Glucosa-6- fosfato isomerasa (GPI)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 1 al 5 son homocigotos

Enzima: Glucosa-6- fosfato isomerasa (GPI)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 1, 3, 5, 7 y 9 son homocigotos.

Enzima: Superóxido dismutasa (SOD) 

Tejido: Hígado

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 270, mínimo 197, promedio 249.

Miliamperes: máximo 58, mínimo 44, promedio 52.

Duración de la corrida electroforética: 160 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 6, 8, 9 y 10 son homocigotos, el organismo 7 es heterocigoto.

Enzima: Fosfoglucomutasa  (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 1 al 5 son heterocigotos.

Enzima: Fosfoglucomutasa  (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx,  eibarra@victoria.ciad.mx

 

Gerres cinereus

Los organismos 1 al 5 para la enzima MDH-1 son homocigotos y los organismos  1 al 5 para la enzima MDH-2 son homocigotos. 

Enzima: Malato desidrogenasa (MDH)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris-citrato/borato  (Poulick) pH 8.7

Aparato de electroforesis horizontal marca LIFE TECHNOLOGIES, modelo H4

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 297, mínimo 210, promedio 265.

Miliamperes: máximo 56, mínimo 35, promedio 43.

Duración de la corrida electroforética: 165 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

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ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

Gerres cinereus, Código CEIP: GEC

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 161, 3= individuo 162, 4= individuo 163, 5= individuo 164, 

6= individuo 165, 7= individuo 166, 8= individuo 167, 9= individuo 168,

10= individuo 169, 11= individuo 170

GI: Ramón, Karina, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: Laemmli (1970)

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)

Conc. Inyección: 30 µg/carril

Estándar: Broad range (Biorad, Laboratories)

Condiciones de Corrido: 80 V cte.

Tiempo: 2.10 hr

Temperatura: ambiente

Tinción: Azul de Coomasie al 0.125%

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Por punto Isoelectrico (PI)

Gerres cinereus, Código CEIP: GEC

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 161, 3= individuo 162, 4= individuo 163, 5= individuo 164, 

6= individuo 165, 7= individuo 166, 8= individuo 167, 9= individuo 168,

10= individuo 169, 11= individuo 170

GI: Ramón, Jorge, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: 980.16 de la AOAC (1990).

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)

Conc. Inyección: 100 µ g/carril

Estándar: Broad range (Pharmacia LKB)

Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’ min

Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr

Anolito: NaoH 1N

Catolito: H3PO4 1N

Temperatura: 5 oC

Tinción: Nitrato de Plata

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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de Gerres cinereus

 

 

Gerres cinereus, código CEIP: GEC

Carril 1: Estándares de DNA, carril 2: 16S sin digerir, carril 3-4: Digeridos con HinfI.

Identificación de carriles: 1= 16S sin digerir indivíduo 06, 2= indivíduo 06, carril 3= indivíduo 07

 

GI: Gloria Yepiz Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte

Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx, almabper@cascabel.ciad.mx

 

Método: Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.

Secuencias de los primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y 16Sreverse: CGGTCTGAACTCAGATCACGTA

Programa de PCR: Un ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por 1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y  72 ºC por 10 min.

Purificación del fragmento por precipitación con isopropanol.

Enzima de restricción: HinfI, digestión por 3 h a 37 °C

Electroforesis en geles nativos de poliacrilamida al 12%

Estándar: 1 Kb DNA Ladder

Tinción: Bromuro de etidio 1 ug/mL

Tamaños de los fragmentos (pb):

GEC 16S sin digerir

1250

GEC 16S/HinfI

517, 359, 306

 

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Las imágenes e información contenidas en este Catalogo son propiedad Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. (CIAD) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT), y solamente pueden ser utilizados con fines informativos. Para la reproducción parcial o total de la información con fines académicos, se deberá contar con la autorización escrita de la Direccion Genral del CIAD, A. C.

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 Diseño y Elaboración
Felipe Isac Martínez
E-mail: fisac@cascabel.ciad.mx

Centro de Computo
CIAD-Hermosillo
Carretera a la Victoria km. 0.6, CP 83000
Hermosillo, Sonora
Tel (
662) 289-24-00 ext: 278