Lutjanus argentiventris
 

 

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Nombre de la especie: Lutjanus argentiventris (Peters, 1869)

Nombre vernacular: Pargo amarillo (Yellow snapper)

Clave: Colref. CIAD 98-03; Banco 98-03

Código CEIP: LUA

Longitud total: 19.2 cm

Nombre de la especie: Lutjanus argentiventris (Peters, 1869)

Nombre vernacular: Pargo amarillo (Yellow snapper)

Clave: Colref. CIAD 98-03; Banco 98-03

Código CEIP: LUA

Tamaño: 10.1 cm


NOMBRES VERNÁCULOS:

Español: Pargo amarillo, pargo alazán.

Inglés: Yellow snapper, yellowtail snapper.

 

DESCRIPCIÓN ORIGINAL: Peters, W. 1869. Über neue oder weniger bekannte Fische des Berliner Zoologischen Museums. Monatsb. Akad. Wiss. Berlin 1869: 703-711.

 

SINONIMIA: Ninguna.

 

DIAGNOSIS: Cuerpo relativamente alto y alargado, moderadamente comprimido. Altura máxima de 2.5 a 2.7 en la longitud patrón. Cabeza larga de 2.5 a 2.8 en la longitúd patrón, perfil anterior de ésta muy empinado, hocico prominente de 2.5 a 3.2 en la longitud de la cabeza, preopérculo con escotadura y tubérculo poco acentuado. Dientes de cónicos a caniniformes; maxilar corto apenas llega al margen anterior de la pupila, con dientes cónicos y de 1 a 2 pares de caninos en la punta. Dientes de la mandíbula inferior alargados, pero no tan grandes como los caninos. Placa de dientes vomerianos triangular o semilunar, con una extensión posterior mediana larga, en forma de ancla ó flecha. Dientes palatinos y linguales en bandas, estas últimas con un área de dientes granulares. Aleta dorsal con X espinas y 14 radios blandos. Aleta anal con III espinas y 8 radios blandos. Perfil posterior de aletas dorsal y anal redondeado a anguloso. Aletas pectorales con 16 a 17 radios blandos, escamadas en la base, más largas que las ventrales. Aleta caudal emarginada. De 12 a 13 branquiespinas (incluyendo rudimentos) en la rama inferior del primer arco branquial. Series de escamas en el dorso paralelas a la línea lateral.

 

Coloración: Rosáceo-rojizo anteriormente, volviéndose amarillo o dorado intenso en la mayor parte del cuerpo. Dorso bronceado-café. Los jóvenes tienen una distintiva línea azul cielo debajo del ojo que se fracciona en manchas conforme el pez alcanza la madurez, llegando a menudo a desaparecer completamente con la edad. Los juveniles también tienen una banda sombreada a través del ojo la cual se obscurece en los adultos, así como varias bandas claras en los lados del cuerpo las que desaparecen con la edad. Existen ejemplares con el dorso y los flancos verde-aceitunados y la región ventral de un vivo rojo (posiblemente corresponden a individuos en fase de desove). Aletas rosáceo oscuras, especialmente las pectorales, caudal amarilla.

 

TALLA: Alcanza hasta 66 cm de longitud total.

 

HABITAT: Los adultos viven en arrecifes rocosos y coralinos costeros cerca de cuevas y cavidades, hasta 60 m de profundidad. Son depredadores nocturnos, principalmente al oscurecer y al amanecer, alimentándose de pulpos, peces pequeños y crustáceos. Sus actividades diurnas incluyen el cortejo el cual es más evidente durante los meses de invierno, cuando los adultos grandes se reúnen y se mueven frenéticamente dentro y fuera de las cuevas. Los juveniles aparecen al final de la primavera y muy a menudo se localizan en las pozas de marea y sistemas lagunares-estuarinos. Esta especie eurihalina llega incluso a penetrar en las aguas dulces. Durante el verano es común observar grandes cardúmenes de juveniles avanzados sobre los arrecifes.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA:. Oceanside (sur de California, U.S.A.), todo el Golfo de California desde Puerto Peñasco, Sonora, México hasta Isla Lobos de Afuera, Perú, incluyendo Isla del Coco e Islas Galápagos.

 

LITERATURA BÁSICA:

 

Allen, G.R., and D.R. Robertson (1994). Fishes of the tropical eastern Pacific. Univ. Hawaii Press, Honolulu, Hawaii, xix+322 pp.

 

Allen, G.R. (1995). Lutjanidae: 1231-1244. En: Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (Redactores Técnicos). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico centro-oriental. Vol. III. Vertebrados-Parte 2: 1201-1813.

 

Chirichigno-Fonseca, N. (1974). Clave para identificar los peces marinos del Perú. Inst. del Mar de Perú, Callao. Inf. (44): 387 pp.

 

Eschmeyer, W.N., E.S. Herald, and H. Hammann (1983). A field guide to Pacific coast fishes of North America, from the Gulf of Alaska to Baja California. The Peterson Field Guide Series No. 28. Houghton Mifflin Company, Boston, U.S.A., 336 pp.

 

Goodson, G., and J. Weisgerber (1988). Fishes of the Pacific coast. Alaska to Peru, including the Gulf of California and the Galapagos Islands. Stanford University Press, Stanford, California, U.S.A., 267 pp.

 

Peters, W. (1869). Über neue oder weniger bekannte Fische des Berliner Zoologischen Museums. Monatsb. Akad. Wiss. Berlin 1869: 703-711.

 

Thomson, D.A., L.T. Findley, and A.N. Kerstitch (2000). Reef fishes of the sea of Cortez. The rocky-shore fishes of the Gulf of California. (Revised edition) University of Texas Press, Austin, Texas, U.S.A., 353 pp.

 

Walford, L.A. (1937). Marine game fishes of the Pacific coast from Alaska to the Equator. Univ. Cal. Press, Berkeley, 205 pp. [Reimpresión, con correcciones, TFH Publs. & Smithsonian Inst. Press, 1974].

 

Yáñez-Arancibia, A. (1980). Taxonomía, ecología y estructura de las comunidades de peces de lagunas costeras con bocas efímeras del Pacífico mexicano. Centro Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nal. Autón. México, Publ. Esp. 2: 1-306 (1978).


PERFIL LIPIDICO

Perfil de Acidos Grasos de Lutjanus argentiventris (LUA). Cromatograma Típico.

Captura: Mazatlán.

Fecha de Captura: Oct. 7, 1998

 

1 Láurico Estándar Interno C12:0

2 Mirístico C14:0

3 Palmítico C16:0

4 Palmitoleico C16:1n-7

5 Esteárico C18:0

6 Oleico C18:1n-9

7 Linoleico C18:2n-6

8 Linolenico C18:3n-3

9 Erúcico C22:1

10 Eicosapentaenoico EPA C20:5n-3

11 Nervónico C24:1

12 Docosahexaenoico DHA C22:6n-3

 

 

Acido graso C14:0 C16:0

C16:1n-7

C18:0 C18:1n-9

C18:2n-6

C18:3n-3 C22:1 EPA C20:5n-3 C24:1 DHA C22:6n-3
% 1.5-1.6 31.0-31.3 5.0-5.1 13.3-13.5 13.3-14.1 1.4-1.5 0.7-0.8 5.3-5.6 6.0-6.1 1.1-1.2 10.0-10.4

 

Notas:

 

Los rangos de porcentaje de ácidos grasos representan los mínimos y máximos calculados para la especie.

 

La suma del total en la tabla no es el 100% ya que el porcentaje faltante corresponde a la suma de los porcentajes de las áreas de los picos no identificados. 

 

 

GI: Dra. Belinda Vallejo, Q. María del Carmen Estrada

Contacto: vallejo@cascabel.ciad.mx

 

ANALISIS DE ACIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFIA DE GASES

 

Técnica de preparación in-situ:

·         Saponificación directa de músculo liofilizado CH2Cl2/NaOH 0.5N en MeOH

·         Derivatización con BF3 (Bis-trimetilsilil-trifluoroacetamiada)

·         Extracción en Hexano

 

Análisis por cromatografia de gases:  

Equipo:  Hewlett-Packard Modelo 6890.

Columna capilar: SP-2560ä (100 m x 0.25 mm di x 0.30 mm de espesor)

Programa de temperatura: 165ºC/20min,  5º C /min,  220ºC/51min

Temperatura de inyector y detector: 250ºC

 

 Identificación de los ésteres metilados de ácidos grasos: por comparación de los tiempos de retención con estándares analíticos comerciales.

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PERFIL DE ISOENZIMAS

Lutjanus argentiventris

Los organismos 1, 2, 4 y 5 son homocigotos, el organismo 3 es heterocigoto.

Enzima: Fosfoglucomutasa (PGM)

Tejido: Músculo

Gel de almidón de papa al 10% (Sigma/S-4501) Número CAS 9005-84-9

Buffer Tris Borato EDTA pH 8.6

Aparato de electroforesis horizontal marca R. Shadel INC.

Fuente de poder marca VWR SCIENTIFIC,  modelo VWR 105

Volts: máximo 212, mínimo 197, promedio 205.

Miliamperes: máximo 30, mínimo 8, promedio 18.

Duración de la corrida electroforética: 255 minutos.

GI: Gabriela, Estela

Contacto: gvp@victoria.ciad.mx, eibarra@victoria.ciad.mx

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ANALISIS ELECTROFORETICO

Por Peso Molecular (PM)

Lutjanus argentiventris, Código CEIP: LUA

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 175, 3= individuo 176, 4= individuo 177, 5= individuo 178, 

6= individuo 179, 7=individuo 180, 8= individuo 171, 9= individuo 172,

10= individuo 173, 11= individuo 174

GI: Ramón, Jorge, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: Laemmli (1970)

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: Poliacrilamida-SDS (10%)

Conc. Inyección: 30 µg/carril

Estándar: Broad range (Biorad, Laboratories)

Condiciones de Corrido: 80 V cte.

Tiempo: 2.10 hr

Temperatura: ambiente

Tinción: Azul de Coomasie al 0.125%

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Por punto Isoelectrico (PI)

Lutjanus argentiventris, Código CEIP: LUA

Identificación de carriles: 1= Est, 2= individuo 180, 3= individuo 179, 4= individuo 178, 5= individuo 177, 

6= individuo 176, 7= individuo 175, 8= individuo 174, 9= individuo 173,

10= individuo 172, 11= individuo 171

GI: Ramón, Jorge, Guille

Contacto: rpacheco@cascabel.ciad.mx

          guilleg@cascabel.ciad.mx

 

Método: 980.16 de la AOAC (1990).

Análisis de Fracción sarcoplásmica

Tipo de Gel: PAG plates pH 3.5-9.5 (Pharmacia LKB)

Conc. Inyección: 100 µ g/carril

Estándar: Broad range (Pharmacia LKB)

Prefoco: 30 W/50 mA/1000V /30’ min

Foco: 30 W/50 mA/1300 V/2.5 hr

Anolito: NaoH 1N

Catolito: H3PO4 1N

Temperatura: 5 oC

Tinción: Nitrato de Plata

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PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI de Anisotremus dovi

 

PCR-RFLP mtDNA 16S/HinfI y 16S/MspI de Lutjanus argentiventris

 

Lutjanus argentiventris, código CEIP: LUA

Carril 1: 16S sin digerir, carriles 2 y 3: Digeridos con HinfI, carriles 4 y 5: Digeridos con MspI, carril 6: Estándares de DNA.

Identificación de carriles: 1= 16S sin digerir indivíduo 10, 2= indivíduo 10, 3= indivíduo 01, 4= indivíduo 10, 5= indivíduo 01

 

GI: Gloria Yepiz Plascencia, Alma B. Peregrino Uriarte

Contacto: gyepiz@cascabel.ciad.mx, almabper@cascabel.ciad.mx

 

Método: Polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción del gen mitocondrial 16SrRNA amplificado por PCR (PCR-RFLP) a partir de DNA total de músculo.

Secuencias de los primers: 16Sforward: CCCTCGTACCTTTKGCATCATGA y 16Sreverse: CGGTCTGAACTCAGATCACGTA

Programa de PCR: Un ciclo de 94 ºC por 3 min, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, 34 ciclos de 94 ºC por 1 min, 60 ºC por 1 min y 72 ºC por 3 min, y  72 ºC por 10 min.

Purificación del fragmento por precipitación con isopropanol.

Enzimas de restricción: HinfI y MspI, digestión por 3-5 h a 37 °C

Electroforesis en geles nativos de poliacrilamida al 12%

Estándar: 1 Kb DNA Ladder

Tinción: Bromuro de etidio 1 ug/mL

Tamaños de los fragmentos (pb):

LUA 16S sin digerir

1275

LUA 16S/HinfI

1275 (no digirió)

LUA 16S/MspI

1275, 992, 718, 568 (digestión parcial)

 

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Las imágenes e información contenidas en este Catalogo son propiedad Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. (CIAD) y del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT), y solamente pueden ser utilizados con fines informativos. Para la reproducción parcial o total de la información con fines académicos, se deberá contar con la autorización escrita de la Direccion Genral del CIAD, A. C.

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 Diseño y Elaboración
Felipe Isac Martínez
E-mail: fisac@cascabel.ciad.mx

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